thomas40091

Bonjour Sabine, je suis très attristé de ce qu'il t'arrive. J'ai parcouru de nombreuses fois ton blog et ton bac est magique ! Je me permet ce petit message car ce qui est arrivé à ton euphyllia me rappelle quelque chose d'inexpliqué récemment : un copain était en train de perdre son euphyllia (cause nitrates) le même que le tiens me semble t-il et du coup je le prend en pension. La plus grosse des "têtes" semblait en très mauvais état et je me doutais de ne pas la sauver. Par contre une belle partie adjacente s'était regonflée immédiatement et les jours qui suivirent celle ci était à mon avis sauvée, bien regonflée et ouverte tout au long de la journée. L'autre partie avait commencée à perdre ses tentacules et une gelée brune commençait à la recouvrir jusqu'à l'apparition du squelette quelques jours plus tard. Et un matin quelle ne fut pas ma surprise de voir la tête qui se portait bien la veille complètement disparue (plus de tentacules visibles) et couvert d'un voile brun marron de type bactérien. Et cela en une seule nuit. En deux jours squelette à nu il en était terminé... :( En revanche aucune autre perte imputable à cette mésaventure. Je me permet du coup de donner une différence de maintenance je n'utilise pas de biopellets et jamais utilisée. En revanche j'ajoute chaque matin 1/4 de sucre dans la décante depuis déja bien longtemps. D'ou pourquoi ne pas tenter le remplacement de tes pellets par une source de carbone voire 3 type VSV à des doses très controllées en vu de créer une compétition bactérienne induisant la disparition de cette souche néfaste. Bien entendu sans cultures bactériennes sur boites de pétri et identification de la souche ceci n'est que purement hypothétique et pourrait même avoir des effets contraires. Je te souhaite bon courage, ne perd pas le moral et merci encore pour toutes ces photos qui en font rêver plus d'un... Thomas.

Salut et merci pour vos encouragements ! Les derniers sont morts ce matin Je pense à un manque de nourriture adaptée et aussi un gros souci avec l'entonnoir qui a débordé dans la nuit du coup certains sont passés dans la décante et du coup le flux circulaire d'eau s'est coupé j en ai retrouvé certains collés aux parois de l'entonnoir ! C'est pas grave, je vais essayer d'améliorer le système pour la prochaine, le gros soucis étant que le bas de l'entonnoir est fermé avec des mailles de filtre à café réutilisable (très fin) et que de ce fait il se bouche en deux jours = résultat de niveau d'eau monte dedans et déborde. Donc en conclusion, obtenir de la nourriture adaptée n'est pas le plus compliqué mais le système de bac a alevin l'est beaucoup plus... si certains ont des idées de bricolages ou autre n'hésitez pas

J'ai pas eu le temps de contacter Lautan mais je vais le faire prochainement... mais j aurai pas dû essayer la couveuse, le contact répété avec le nylon a du les tuer ! L'entonnoir a flux rotatif est peut être la bonne solution ou une sphère de Kreisel à bricoler. Pour le plancton, c'est du congelé jaune en cube de chez PO, les particules sont invisibles à l'oeil nu une fois dissout. Je vais surement essayer de lancer quelques cultures de phyto et zoo dès que j'aurai récupérer un microscope histoire de voire ce que je cultive, et peut être congeler quelques alevins morts voir ce que je peux voir au micro niveau taille de la bouche... et tes occelaris Sabine, une ponte récente ?

Des petites nouvelles pour ceux que ça intéresse : les parents ont finalement libéré les alevins hier en pleine journée vers midi, ce qui donne environ 8 / 9 jours d'incubation. Ils sont extrêmement petits, 2 mm de long pour 1/4 mm de large, à peine visibles...s'en est assez décourageant. J'ai finalement testé deux options : _ couveuse classique en maille de nylon fine dans le bac des parents, j en avais mis environ 20 ou 30 mais ce matin plus personne... _ système entonnoir avec flux d'eau rotatif, il en reste 3 en vie sur les 10 que j'y avais mis. Comme nourriture, étant pris de court, je peux leur proposer que des rotifères enrichis vivants, marine snow et du plancton congelé mais je suis incapable de dire s'ils s'en nourrissent, à votre avis ? Bon c'est mort pour cette fois j'en suis bien triste et ma cuisine ressemble vaguement à une pisciculture!!! Si certains ont des conseils ou retours d'expérience je suis très intéressé car j'aimerai faire quelque chose de la prochaine... récifalement

coucou, je te remercie pour toutes ces infos comme tu dis ce sera certainement pas pour cette fois ci puisque rien de prévu mais je vais surveiller et si j arrive à observer les larves alors je lancerai les cultures et préparerai un bac en réseau avec le reste ! Faut il prévoir un agitateur comme dans l'élevage des mandarins (picturatus) plutot qu'un léger bulleur ou autre ? je vous tiendrai au courant, d'ici pas longtemps si j arrive a observer quelque chose. Par contre ils ne sont pas en bac communautaire mais dans un petit 70 L qui leur est dédié...ça a l'air de leur plaire !! a bientot c'est bien une ponte, je me suis décidé à regarder quand même sous l'une des pierres du terrier au moins si je tente quelque chose ce sera pas pour rien. Ils sont très nombreux et petite, couleur grisatre on distingue peut être des points noir (futurs yeux?) La photo est mauvaise mais j ai fait très vite, j'ai remis la pierre exactement de la même façon, le mâle semblait y être retourné direct après...j espère que j ai pas fais une bêtise!!!

Salut salut, alors après pas mal d'observations ce week end le mâle est bien vivant, je l'ai apperçu dans le fond du terrier. Par contre il ne sort même pas pour manger alors que la femelle et l alpheus le font normalement. Maintenant ça fait trois jours qu'il ne sort pas, je ne touche à rien de peur de les déranger. Combien de temps d'incubation à 26°C ? une semaine environ ? J'ai un peu de temps, je pourrai essayer mais aucune souche de dispo, juste du plancton congelé...et il doit pas rester beucoup de temps. Et surtout comment les récupérer ? seront ils libérés en pleine nuit ? Ils sont dans un petit bac de 70 L juste pour eux en série sur le gros bac et sa décantation... (merci Sabine, as tu déja essayé d'en élever ?) amicalement, thomas.

Bonjour à tous, alors voilà depuis plusieurs jours, la femelle Stonogobiops nematodes présente un abdomen très enflé... Et ce matin, plus du tout de ventre et je ne vois pas du tout le mâle sortir. Seule la femelle et l' Alpheus sont devant le terrier et lui ne se montre pas... J'ai cherché un peu sur le net mais rien de concret mis a part que ce sont des poissons démersaux mais absolument rien sur une repro. Donc si certains ont déja observé ce phénomène ou même observé des larves je suis preneur. Je me doute bien que l'élevage est quasi impossible mais juste savoir s'il s'agit bien de cela et si le mâle joue un rôle important !! une petite photo de la femelle hier

Salut, je ne peux pas te MP pas assez de messages mais je suis de Rouen pas très loin de chez toi et je suis libre assez souvent. j'ai enlevé ton adresse mail qui ne peut être diffusé que par MP...rassure toi, je t'ai envoyé un petit message avant!!

Je suis tout à fait d'accord avec ce que tu dis Sabine mais je ne pensais pas vraiment aux explications basiques données dans le magasine. Quand je parle de résultats fiables ce serait des données quantifiées de laboratoires (indépendants ce qui serait encore mieux) avec des protocoles scientifiques : plusieurs bacs , tous rôdés, ensemmencés de façon identique ; des bacs témoins etc... Et surtout, ce qui semble intéressant c'est qu'est ce que l'on cultive vraiment ?? si on me répond nitrosomonas et nitrobacter ça je m'en doutais bien...mais coté bactéries indésirables responsables par exemple de l'émission de toxines, de déchets métaboliques secondaires, de consommation d'éléments précis dans l'aquarium, de surconcentrations etc... Pour cela ce ne sont pas des tests que l'on fait habituellement mais plutot des cultures sur boîtes de Pétri microbiologiques sur des aquariums en conditions contrôlées...bref ce que l'on trouve pas pour le moment je ne pense pas que cela ait été fait quelque part !

Je trouve bien dommage que l'aquaroiphilie ne soit pas suffisamment porteur pour avoir des résultats et publications SCIENTIFIQUES avec protocoles et expériences témoins... Mais à part expliquer ce qui nous arrive et essayer d'en déduire quelque chose qui par ailleur n'aura que peu de valeur je ne vois pas trop ou obtenir des réponses concrètes.. Si certains d'entre vous on vu passer ce genre d'études ! Sinon il y a un article dans zebrasomag mais juste une présentation incitant à leur utilisation, rien de concret... Au final la technique du sucre et biopellets sont loin d'être si différentes ! cela comporte des risques, et en sciences risques = produit de ( l'aléa ) par la ( vulnérabilité ) . Autant dire que ces valeurs comportent un nombre de facteurs énorme et même l'importance du hasard pour l'aléa...

Bonjour à tous, je me permet de vous conseiller d'appliquer cette méthode avec des PINCETTES... sous peine de voir vos coraux mourrir d'infections bactériennes ! En ajoutant du sucre ou autre source de carbone on arrive à ce que les microbiologistes font dans leurs éprouvettes de laboratoire c'est à dire une culture de bactéries et la plupart des souches présentes dans nos bacs seront favorisées y compris les mauvaises. Vos quantités semblent très importantes, de ce que j'ai pu lire un morceau de sucre pour 1600 L évite trop de désagréments et ce n'est pas conseillé de le faire chaque jours mais plutot pendant deux / trois jours puis de réitérer quand le besoin s'en fait sentir (une fois tous les mois ou deux trois mois encore mieux). Cette méthode permet de concurrencer aussi les cyanos, mais en abuser fait aussi que votre aquarium risque de ressembler a la lune pour cause de consommation totale de tout ce qui traîne dans le bac.. Mais bien entendu aucun protocole ou résultats scientifiques n'ont été publiés à ma connaissance sur ce sujet, ceci n'est que le résultat d'expériences personnelles. Un petit dernier conseil : écumeur de compétition et micron bag changé tous les jours de rigueur... amicalement, Thomas.

Même constat mais sur deux tests neufs : JBL et tridacna présentent une différence de 40 mg/ L de Calcium. Le JBL donnant 360 tandis que le tridacna 400... La pousse rapide de certains coraux ou mieux une algue calcaire nommée haliméda reste le meilleur test dynamique, si celle ci ne grandit plus voire devient verte foncée il manque du calcium !!

Effectivement choc osmotique est peut être un mot extrême mais dans les faits c'est exact... Toute substance dissoute engendre des phénomènes d'osmose entre le milieu intracellulaire et extracellulaire. Il se crée un équilibre dynamique géré par des pompes membranaires ATP dépendantes c'est à dire énergivores et engendrant de ce fait un stress pour rétablir les différences de pressions osmotiques et hydrostatiques de part et d'autres de la membrane. Ainsi tout apport trop brutal engendrera un travail cellulaire accru ! Il faut privilégier une constance dans les paramètres et éviter des ajouts en une fois chaque semaine par exemple...après est ce que cela peut jouer sur la coloration ??

Salut papito, merci beaucoup pour ces précisions ! Je pense que de nombreux récifalistes devraient s'inspirer de ta technique qui semble très Cartésienne !! J'aurai une question, mais libre à toi de garder tes secrets de maintenance, pourquoi utilises tu RAC (substrat ?) + bailling ? que supplémentes tu ? du calcium en plus ? Mg, des oligos... Merci d'avance, amicalement, Thomas.