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Tout ce qui a été posté par Phil75
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Salut, J'ai un modèle analogue (je crois 385 l) et j'en suis très content ; la pompe booster te permet d’accélérer la production d'eau osmosée. Par contre, il ne faut pas s'attendre à des miracles ! En fonction de ta pression, tu auras 1 l d'eau osmosée pour 4 litres de rejet environ (ça peu être mieux ou pire...) ; c'est à prendre en compte. Sur Paris, il y a tellement de nitrates (50 mg/l) que j'en ai quand même à la sortie de l'osmoseur (entre 5 à 10 mg/) ; à voir dans ta région. Depuis, pour les bacs à crevettes j'ai suivi les conseils de membres expérimentés à savoir quasiment jamais de changement d'eau, juste en fonction de la quantité des nitrates qui s'accumulent mais celle-ci est plutôt stable grâce à quelques mousses et plantes flottantes. Je compense juste l'évaporation de l'eau avec de l'eau osmosée. Quand je fais un changement d'eau je prends plutôt de l'eau en bouteille car la marque que je prends contient très peu de nitrates (Volcania : 2 ml/l) ; je la reminéralise avec des sels Preiss. A+
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Bonsoir, Ce soir dans mon bac à sélection de CRS, je remarque une femelle qui vient juste de muer. Grâce à ce forum, j'ai pu lire le principe de la boîte plastique fermée pour faire des accouplements contrôlés. Je la mets donc dans ladite boîte avec une panda et une blue bolt (ayant un doute sur le sexe de ces 2 TWB). Au bout de 10', la blue bolt féconde clairement la femelle CRS ! Génial, d'une part je connais maintenant le sexe de ma blue bolt et d'autre part, en perspective, des juvs F1 et TWB dans 3/4 semaines si tout va bien ! J'attends encore presque une heure au cas où mais rien ne se passe plus. Je décide de relâcher tout ce monde dans le bac où il y a des TWBM F1 et une autre panda. J'ai hélas un mâle F1 qui rapidement grimpe sur la femelle CRS et a priori la féconde également. D'où 2 questions : - qu'est-ce qui prime : la semence de la première copulation ou les deux semences vont se mélanger et féconder les œufs aléatoirement ? - Je suppose que si je ne vois aucun œufs bleus, c'est fichu je n'aurai que des CRS avec un gêne TWB trop dilué (principe de la CRS fécondée par une F1) ? Merci de vos retours d'expériences.
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Bonjour, Je suis heureux comme tout, j'ai craqué ! Maintenant j'ai des TWB (1 BB + 2 panda) ; je trouve les panda magnifiques : on dirait qu'elles sont faites en porcelaine blanche et noire !! Par contre, je trouve très difficile de savoir le sexe de la BB et des 2 panda. Pour la BB, suivant les angles de vue, un coup je me dis c'est une femelle et 2' plus tard ah non on dirait un mâle ! Désolé pour la qualité médiocre des photos car je ne suis pas vraiment équipé pour la macro. La BB : Une des 2 panda (un peu floue ) La même avec une copine : Une TWBM (oui, je sais un peu floue encore !) Et enfin quelques crystal red plus communes que je suis en train de sélectionner : Une grainée :
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une idée pour un système de refroidissement ??
Phil75 a répondu à un(e) sujet de Miumi dans Question pour les débutants
Tu trouveras sur le net des solutions du type que tu cites : recyclage de ventilo de PC. Sur le même principe certains sites marchands vendent des ventilateurs prêts à être installés pour les nano mais ça peut te revenir cher pour 7 bacs (un système à 2 grilles = 34 euros et à 4 grilles = 47 e sans les fdp). Personnellement j'y pense pour cet été mais bon je suis sur Paris pas à Aix !! -
Il suffit de mesurer les nitrites tous les jours pour repérer le pic puis sa descente jusqu'à 0. Sur les petits bacs, cela peut prendre 1 ou 2 semaines. Tu laisses roder le bac encore 2 semaines, histoire que la microfaune se développe et c'est bon. Pour un nouveau bac, j'avais mis dans le filtre des masses provenant d'un autre nano... et bien j'ai quand même eu un pic de nitrites ! Pour un plus gros bac (300 litre nets), je n'ai jamais eu de pic (j'ai mesuré tous les jours pendant 2 mois) ! Il faut se méfier des poncifs ! La meilleure des solutions est de laisser le bac se roder tout seul tout en mesurant les nitrites pour suivre le cyclage.
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Dernier post concernant ce sujet car j'ai perdu le dernier oeuf suite à une mauvaise manipulation (je vous passe les détails !). Voici les dernières photos : Alors, sur ces dernières observations, impossible de trouver le 2eme œil !! Malformation (?) mais avant on en voyait bien 2 ! Mystère. Par contre, j'ai revu la partie qui semblait battre comme une cœur. Sur la 3eme photo, on peut voir une petite bête qui tournait autour de l’œuf : elle avait des cils qui vibraient au niveau de la "tête" soit pour filtrer l'eau soit pour se déplacer ; cela ressemblait un peu à une paramécie mais en plus gros (c'est relatif !). Notez le développement des moisissures ou algues sur la dernière photo. La prochaine fois que je récupère un œuf, je ferai un protocole d'observation plus "organisé" !
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J'ai exactement les mêmes bestioles que Prunelle dans mon bac ! Je pense que ce sont des planaires. Plusieurs fois, j'ai mis un piège contenant une moule et la 1ere fois, j'en ai récupérés (et éliminés cheers !) une dizaine ; les fois suivantes un ou deux voire zéro. J'en aperçois un de temps en temps et parfois je les enlève avec une longue pince. Ils font partie de la micro faune, non ? Je n'ai pas l'impression qu'ils s'attaquent aux juvs ; ils sont plutôt charognards et opportunistes (juvs malades ou mourantes). Que ceux qui ont assisté à une attaque de planaires sur des juvs nous apportent leur témoignage pour enrichir ce post. Personnellement, j'ai récupéré un planaire sur une juv qui était morte ; bien sûr, impossible de savoir si le planaire l'a tuée. Je l'ai observé au microscope et parfois sa tête pouvait être qualifiée de triangulaire et parfois non !
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Voilà un planaire (je pense) trouvé sur une juv morte ; morte à cause du planaire ou est-ce que le planaire a juste fait le charognard ? Il a une sorte de trompe qui est peut-être un dédoublement de sa personne (!) ou une extension de son tube digestif (c'est en tout cas dans son prolongement) ; pas évident à voir car je n'ai pas pu le prendre en photo plein cadre ! Drôle de bête en tout cas !
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Bonsoir Beebee, J'ai une une idée (et oui !) en observant mes crevettes en train de nettoyer une feuille de catappa. Certaines fois, je vois clairement qu'elles arrachent de petits morceaux de feuilles, d'autres fois, j'ai plutôt l'impression qu'elles les nettoient. J'ai donc prélevé un morceau de feuille dans un bac avec une dizaine de crevettes et un autre bout dans un aqua en rodage (déjà cyclé) pour que la microfaune se développe. Il est a noté qu'à l’œil nu ou avec une simple loupe, je peux voir dans les 2 bacs de la microfaune. Je n'ai constaté aucune différence : quelques microscopiques bestioles sur ces 2 échantillons mais pas plus pas moins. Dans les échantillons d'eau non plus (mais prélevé plutôt en surface). Ce we, je prélèverai de l'eau près du sol, pour voir. Bonne nuit
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J'ai refait quelques photos ce soir. En 24 heures, l’œuf est moins translucide ; la juv semble occuper plus de place. Par contre, comme vous pouvez le voir, des "poils" sont apparus sur la membrane : sûrement des micro-algues ou de la moisissure ! Je n'ai pas pu observer de mouvement comme hier : donc soit la juv est morte soit j'ai eu moins de chance (les images sont moins nettes ce soir). Sur la 1ere photo remarquez la régularité des petits points foncés ; j'ai l'impression qu'il y en a moins qu'hier. J'ai perdu un des 2 oeufs qui est retombé dans l'aqua lol A+
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Bonjour, Une de mes crevettes CRS a "perdu" 2 œufs que j'ai récupérés pour les observés au microscope (voir photos ci-après). Je pensais que ces œufs d'une quinzaine de jours étaient soit non fécondés (mais à l’œil nu je voyais bien qu'il y avait une forme à l'intérieur) soit "morts". Le microscope m'a permis de constater qu'il y avait de la vie la-dedans ! Sur la partie que j'ai entourée en rouge, j'ai pu observer une sorte de "vibration" ou de mouvements réguliers (un peu comme une respiration mais en plus rapide). Les yeux sont clairement visibles. Remarquez les petits points noirs (le long des pattes ou sur la membrane de l’œuf ?). Bon, je n'apporte rien de particulier (!), je n'ai pas le vocabulaire mais l'observation microscopique m'a plu !! Pas évident de repérer l'anatomie d'une crevette qui est roulée en boule et pas entièrement formée !
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reminéraliser au sel Preis... quelles valeurs ??
Phil75 a répondu à un(e) sujet de Miumi dans Question pour les débutants
Loin de moi l'idée de rejeter ta méthode ou une autre d'ailleurs ! Je faisais juste un retour sur ma façon de faire qui me paraît plus simple quand on a un conductivimètre, du moins dans un premier temps quand on débute comme moi ! Par contre, je suis très intéressé par ton expérience : que vérifies-tu en dehors de la conductivité et du taux de NO3 ? Perso, je vérifie de temps en temps, en plus, le PH, le GH et le KH. Merci -
reminéraliser au sel Preis... quelles valeurs ??
Phil75 a répondu à un(e) sujet de Miumi dans Question pour les débutants
Cela me paraît bien compliqué pour reminéraliser de l'eau osmosée ! A-t'on vraiment besoin de cette précision ? Perso, j'utilise un conductivimètre acheté pour moins de 20 € sur Ebay (j'ai vérifié les valeurs affichés avec des tests en goute poiur le GH et c'était nickel !). Je prépare un bidon de 5 l d'eau osmosée, puis avec une cuillère je rajoute petit à petit du seil preiss, je mesure la conductivité au fur et à mesure. Avec la pratique, en 2 ajouts de sel preiss on a la value désirée. Pas de calcul ! Si on se trompe (les rares fois !) et qu'on dépasse la valeur µs, il suffit de rajouter de l'eau. osmoséé. A+ -
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Tu enlève le sable sur une partie de ton aqua (tu peux bloquer le sable qui reste avec une règle en plastique ou une pierre ou autre chose mais qui doit être dans un matériau neutre), une fois le vide fait tu mets tout doucement l'akadama en le déposant délicatement avec une cuillère à soupe ou une louche (ou tout autre récipient : un verre, une petite boîte en plastique, etc.). Il restera sûrement un peu de sable mais bon c'est une solution à essayer. Le plus dur, c'est d'enlever le sable ! A+