Regis16

Bonne chance Stef

on ne s'est pas compris anne.. je n'ai pas dit que c'est à cause de la poule s'ils ne grandissent pas bien, j'ai dis que la poule les mène picorer et gratter le sol au lieu de rester stagner au même endroit et manger (ce qu'ils feraient s'ils étaient enfermés). tu l'as dis toi même,à la dernière couvée, ils sont restés 1 mois enfermés et ont bien grossis.. les poussins doivent être lâchés par beau temps mais seulement après avoir bien mangé le matin! je ne les lâche jamais avant être sur que tous ont mangés et sont en train de dormir. et bien sur je suis pour l'effet de la vitamine D plutôt que la lampe infra-rouge

c'est aussi grand que des oeufs de Houdan, même plus gros.. le truc c'est que je n'ai jamais vu d'oeufs de naines donc difficile à savoir! même certaines de mes poules qui sont naines à force de consanguinité, font des oeufs maxi-jumbo!

oui je vais les caresser chaque jour en les retournant. Par contre agnès t'as une idée si les braeckel sont Gr ou naines ? et quel genre de marans il a ? pour ça j'en suis certain... maintenant faut que tout el monde sorte.

allez courage et bonne chance

merci pour ces messages d'encouragement.. celà dit, pour mirer les oeufs e marans, il faut se lever de bonheur... Il y en qui sont opaques à 85% donc des que l'embryon va commencer à se former on ne verra plus rien! je sens qu'il y aura des petites bombes à désamorcer au nez! Sinon Plume à quoi vois tu que les oeufs de marans d'agnès sont des NC ? En fait l'éleveur m'a dit que ces oeufs là ne sont pas foncés, et les poule ont étés accouplées avec un COQ améliorateur avec gène de coquille très foncé! Si au bout de la génération, les petits n'ont pas améliorés la couleur de l'oeuf, la poule est écartée e la repro. de plus je ne me plains pas car ne connaissant pas la qualité des paquets qu'il faisait, le taux de casse possible, l'élevage de ces poussins dans la sale période de chez moi, et de voir si vraiment cette poule là me plairait, je n'ai pas commandé des oeufs de poules au standard parfait! J'ai commandé donc en connaissance de cause et exprès des oeufs de moins bonne qualité, donc moins cher. et puis c'est mieux de débuter la sélection, d'apres moi avec des sujets à améliorer, plutôt qu'avec des sujets parfait! il n'y aurait aucun intérêt d'ares moi! Sinon Plume t'as raison, lorsque les oeufs ont une qualité exceptionnelle, le standard est loin d'etre atteint, ou parfait! ce matin j'ai été regarder les oeufs, taux d'hygrométrie de 50% et température de 37.8°C

tous ces petits sont très jolis, mais il y en a de couleur orangé! qu'est ce que c'est comme race?

bah tout le monde à le droit de donner son avis non? moi aussi je trouve que tous les 15j c'est abusé! Rienq ue pour l'organisme, on ne peux pas recevoir ça 2x par mois ni plus d'une fois par mois. Sinon cancer assuré! J'ai respecté mots pour mot ce qui a été dit sans rien modifier! maintenant à l'aide de notre expérience, nous allons affiner la fiche! si il n'était pas question de discuter dessus, le sujet aurait été verrouillé! Quant à la fumigation des oeufs, moi non plus je ne l'aurait pas fait! Mon éleveur m'a conseillé de mettre les oeufs tout de suite apres la fumigation, je n'ai pas pu le faire tellement ça sentait fort. j'ai eu peur pour les oeufs.. celà dit mon éleveur lui n'utilise que du formol!

je viens de mettre les oeufs en couveuse : la couveuse contient 2 plateau presques pleins avec des oeufs de Agnès : Houdan : 6 Braeckel : 9 faverolles : 7 Marans : 6 brahma fauve herminé noir( Colombia) : 11 brahma perdrix maillé argenté : 8 brahma non marquées : Padou : 1 Mon Eleveur 3 douzaines de marans (normalement 24 NC et 12 NA) d'ores et deja il y aura des pertes : certains oeufs (houdan, faverolles et brahma) sont datés du 7 Juin... d'autres du 8, 11, 14 et 22 juin.. Donc je prévois quand même pas mal de pertes! Logiquement mes oeufs de marans de l'éleveurs eux ont 10 jours! j'ai augmenté ma température pour un départ à 37.8 au lieu de 37.7°c et elle varie entre 37.8 et 38.8.. l'hygrométrie n'est pas encore stabilisée mais sera aux environ de 50%.. demain matin j'en saurais un peu plus! On part donc avec ça et on verra où ça nous mènera .. premier mirage le 9 juillet!

Mes conclusions : lorsque l'on met le formol sur le permanganate de potassium, il y a une petite réaction chimique qui se produit et un gaz s'échappe pendant 1 seconde, et après il n'y a plus de gaz visible, ce qui peut de prime abord faire penser que la formule ets fausse et que ça ne fonctionne pas! refermez la couveuse, c'est bien, ça fonctionne! ne faites pas comme moi qui ai rajouté un peu de formol encore pour espérer relancer le phénomène gazeux, qui en fait ne se produit qu'une fois pendant une courte période! j'ai effectué ce traitement de la couveuse sous la véranda, donc à un endroit hyper-ventilé et plus d'une heure après le traitement, l'odeur est encore présente. j'ai ouvert la couveuse pour un peu libérer ce gaz désagréable! Donc attention à ne pas le faire par exemple dans une cave! A chaque fois que je m'approche de la couveuse, j'ai la sensation d'avoir une gènes aux sinus, ça prends vraiment aux sinus et un léger mal de tête peu subvenir (dans mon cas). Ca à l'air donc très éfficace, mais il faut se protéger suffisamment pour ne pas inhaler ce gaz! . donc évitez de respirer ce gaz

Il faut placer les œufs dans un environnement propre et exempt de germes pathogènes. Certaines espèces de champignons et de bactéries se développent dans le milieu chaud et humide de l’incubateur et comme ces dernières peuvent facilement tuer l’embryon en voie de développement, il faudra absolument nettoyer et désinfecter la couveuse assez régulièrement. Avant de placer les oeufs dans la couveuse il faut nettoyer avec soin toutes les surfaces internes, sans oublier les tiroirs supportant les œufs, avec un désinfectant fungicide et bactéricide. La partie électronique peut être nettoyée en utilisant de l’air comprimé ou en la brumisant très légèrement avec du désinfectant. Après le nettoyage on laissera tous les composants sécher puis on allumera la machine afin d’élever la température interne jusqu’à 26 à 37°C ainsi que l’hygrométrie jusqu’à 50 à 60%. Dès que l’incubateur aura retrouvé ses conditions initiales de fonctionnement il pourra subir une fumigation de formaldéhyde en mélangeant 35ml de formol à 40% à 17,5g de permanganate de potassium par 2,83 mètres cubes de volume d’incubateur ( pour calculer le volume de votre incubateur, cliquez ici.) Quoique ce genre de fumigation soit très efficace il faudra tout de même l’effectuer dans un local très bien ventilé car le formol est cancérigène et très irritant pour les muqueuses et les yeux. C’est pour cette raison qu’il faudra utiliser un masque, des gants et des lunettes et aussi s’assurer que la pièce d’incubation est facilement ventilée vers l’extérieur afin d’éviter que le produit ne s’échappe vers les pièces voisines. Dans la mesure ou une telle fumigation se révèle impossible on pourra toutefois utiliser une brumigation en utilisant un produit disponible dans le commerce. Il ne faut utiliser que des récipients en porcelaine ou des plats pouvant résister aux hautes températures car la réaction chimique est fortement exothermique. De plus les réactifs agissent aussi sur certains métaux et se mêlent ou brûlent le plastique et les autres matériaux inflammables. Avant de procéder à la fumigation il faut refermer toutes les portes, fenêtres ainsi que toutes les autres ouvertures. Ensuite il suffit de placer le permanganate en premier dans le récipient, puis placer ce dernier dans la couveuse puis ajouter le formol et refermer rapidement la porte de l’incubateur. Laisser agir 20’ puis ôter le récipient et laisser la porte de la couveuse ouverte pendant quelques minutes. La machine est alors prête à recevoir des œufs. Il faudra doubler la concentration de la mixture pour les incubateurs n’ayant pas réussi à mener des embryons à terme du fait de maladies ou qui ont incubé des œufs ayant pourri ou explosé. Il faut effectuer une telle fumigation de la couveuse au moins chaque quinze jours, et ce, même pendant l’incubation des oeufs. Si des œufs sont ajoutés fréquemment (chaque quelques jours ou moins), cette fumigation sera alors hebdomadaire afin d’éviter la contamination des œufs par les oeufs additionnels. Seuls les œufs dans les premiers stades d’incubation (5 jours ou moins) ou ceux dont le stade d’incubation est inconnu seront enlevés et placés dans un autre incubateur durant la fumigation. Si on ne dispose pas d’un second incubateur, n’importe quelle sorte de container chauffé à 35,0°C / 37,2°C conviendra pour un si court laps de temps. On pourra aussi entreprendre une fumigation des œufs frais (non incubés) et des œufs couvés pendant plus de 5 jours afin de tuer les germes pathogènes recouvrant la coquille. Il faudra aussi nettoyer et procéder à une fumigation de l’éclosoir après chaque utilisation et selon la même procédure, même s’il n’y a eu qu’un seul œuf disposé dans l’appareil. Si deux œufs ou plus sont placés dans l’éclosoir, la fumigation aura lieu après que le dernier œuf ait éclos et tous les poussins seront ôtés de l’appareil. Si on n’utilise pas la fumigation il faudra alors utiliser des désinfectants mais s’assurer avant tout de bien déterminer à la fois leur efficacité mais aussi leur inocuité par rapport aux œufs. L’utilisation de gants stériles ou de gants neufs et jetables (en plastique, vinyle ou latex) pour manipuler les œufs, le fait de les plonger dans une solution désinfectante avant de les placer en couveuse et les opérations de nettoyage/désinfection des récipients d’eau de l’incubateur aident aussi à maintenir une hygiène optimale pour les œufs. Pour résumer, vous avez besoin donc : - du formol -du permanganate de potassium - une seringue graduée de 10ml (incréments de 0.5 ml) - un récipient pouvant supporter les fortes températures : (un petit récipient inox fait l'affaire) le tout est trouvable en pharmacie pour notre bonheur à tous et ne vous coutera pas plus de 4€ les photos : tout le matériel nécessaire à l'opération sachet de permanganate de potassium (vendu par sachet de 0.5g ou 1g) le permanganate de potassium hors du sachet, pret à recevoir le formol! Le récipient apres la réaction chimique

ahhhhhh !!! grrrrr vous l'avez cherché :

merci oui, oui je vous tiendrais au courant! la fumigation est en cours et je confirme que ça pue et ça donne mal à la tête! Donc je peux dire que ça fonctionne bien! l'humidité à vide est de 47%! je compte faire comme willy a préconisé : 50% jusqu'au 8ème jour et 45 du 9 au 16ème jour et enfin + de 75% à partir du 17ème jour! Plus que quelques heures avant la mise ne place de l'incubation et tout de suite quelques photos! Photos du colis de l'éleveur : une autre méthode des boules de papier fort font office d'amortisseur pour le dessus apres avoir enlever ce papier, on se retrouve face à de la paille et des copeaux de bois tassés lorsque l'on a enlever la bonne couche bien tassée on voit apparaitre la première boite! cette méthode de tassement est très efficace : en effet il faut presque faire des efforts pour enlever la boite de là, ça n'a pas bougé d'un millimètre il faut creuser encore pour enfin voir apparaitre les é autres cartons d'oeufs! chaque oeufs à été emballé individuellement dans de l'essuie-tout (j'ai oublié de prendre la photo devant l'excitation du déballage ) voici enfin tous les oeufs déballés.. notez qu'il n'y a aucune casse! une autre vue des oeufs les petits oeufs de Marans d'Agnès (de bien meilleure couleur que les autres) une des meilleure boite que l'éleveur m'a envoyé (en terme de couleurs, on voit bien la différence.. maintenant il n'y a pas que ça, il y a le standard aussi qui compte) voilà! d'ici 2 heures à peu près le tout ira en couveuse pour à peu près 21 jours d'incubation!

exactement

ben anne c'est tout à fait normal que tes poussins soient moins développés sous poule meneuse! agnès donne tous les éléments nutritifs (protéines, oligo elements, vitamines etc) nécessaires à leur besoins quotidiens, sous poule meneuse ces poussins ont d'apres moi la quantité minimale de tous ces ingrédients! elever des poussins soit même c'ets leur donner ces besoin en quantité maximale et jusqu'a plus soif!

merci vpongo, j'espere que ça ira mieux!

Bon ben j'ai fais ma premiere fumigation et je m'attendais a ce qu'il y ait de la fumée.. ou plutôt un gaz.. mais je crois que ce gaz est assez incolore car je l'ai vu au début puis plus rien! il y a une odeur spéciale que j'évite de respirer.. enfin c'est sensé désinfecter!

oui mais vu qu'ils ne sont pas tous frais et que le transport à duré une semaine ils ont à peu pres 10 à 12 jours donc je ne peux pas attendre 24 heures.. je n'ai pas vraiment vu de résultat en attendant 24 h ou non.. mes premieres incubations ont étés faites apres quelques heures d'attentes 3 ou 4h et j'ai eu 80% de réussite!

3.5. Lutte contre l’histomonose. En théorie, il existe plusieurs molécules efficaces contre Histomonas : les nitroimidazoles (dimétridazole, ipronidazole ou ronidazole,...) qui sont les plus efficaces, les nitrofuranes (nifursol) qui sont moins efficaces (McDougald, 1997a ; Callait, 2002). En pratique la situation est bien différente du fait du retrait du marché de ces molécules. Ainsi le dimétridazole est interdit en tant que médicament depuis 1995 (Réglement CE n°1798/95) et depuis 1998 tous les nitroimidazoles médicaments destinés aux productions animales sont interdits (Réglement CE n°1570/98). Il apparait improbable qu’un nouveau principe actif puisse obtenir une AMM tant qu’aucun laboratoire pharmaceutique n’engagera des recherches dans cette voie (McDougald, 1997b). Ni les anticoccidiens, y compris la roxarsone, ni les antibiotiques actuellement disponibles sur le marché ne sont efficaces contre l’histomonose (McDougald 1997b ; Callait 2002). Des essais in vivo et in vitro avec des dérivés des benzimidazoles (albendazole et fenbendazole) n’ont pas donné de meilleurs résultats (Hegngi, 1999 ; Callait, 2002). La prophylaxie repose sur des mesures sanitaires et des mesures médicales quand cela est possible. La prophylaxie sanitaire va devenir primordiale du fait de l’interdiction des produits chimiques. Un des éléments essentiels est la séparation des espèces, notamment des dindes et des poulets. En effet, même après un long vide sanitaire, il faut éviter de réutiliser un parcours de poulets pour des dindes. Si la cohabitation des deux espèces est incontournable, les deux espèces doivent être totalement séparées. Le personnel devrait changer de chaussures en passant d’une espèce à l’autre. Dans le cas des élevages avec un parcours en plein air, il est impossible d’éviter les contacts entre les dindes et les galliformes sauvages (McDougald et Reid 1978). Les parquets et les parcours doivent être désinfectés entre deux bandes car les oeufs d’Heterakis sont très résistants. Il faut éviter toute contamination fécale des aliments et de l’eau de boisson, éloigner les animaux de toute eau stagnante (Nicholas, 1972). Enfin, il faut lutter contre Heterakis en vermifugeant régulièrement les animaux. La prophylaxie médicale utilisait les produits évoqués pour le traitement. Mais comme ces derniers, ils ont vu leur utilisation interdite. 4. LES AVANCEES DE LA RECHERCHE Un des enjeux de la recherche est de mieux comprendre le parasite, son cycle et l’épidémiologie de la maladie. Un des points majeurs étudié aujourd’hui est la mise en évidence d’une infestation directe entre animaux, sans passage par l’hétérakis. Cette possibilité est actuellement admise par les équipes travaillant dans ce domaine, même si ses modalités restent à définir. Deux voies sont envisagées : la voie cloacale (« cloacal droping ») et la voie orale. Une avancée importante est également la mise en évidence d’un portage sain dans certain élevages de dindes, même si la encore la prévalence de ce portage reste inconnu. La mise en évidence de ce portage sain signifie que l’histomonose clinique est à dissocier de la présence du parasite chez l’'animal et que d’autres facteurs (flores bactériennes, stress, facteurs environnementaux, alimentation, autres pathologies subcliniques,…) doivent jouer un rôle dans la manifestation clinique de la maladie. Une autre hypothèse actuelle a explorer est la possibilité de souches possédant des virulences différentes. Les enquêtes actuelles conduites dans les élevages vont permetrre de définir le rôle de ces facteurs dans le déclenchement de la pathologie afin de mettre en place une prophylaxie sanitaire efficace. De même, il sera important de comprendre comment se déroule la contamination, l’infestation et la dissémination du parasite dans un bâtiment d’élevage. Enfin, les tests in vitro et in vivo permettent actuellement d’effectuer un screening de molécules à visée prophylactiques et/ou curatives contre l’histomonose susceptible de remplacer celles interdites. Enfin, des outils diagnostiques et pronostiques sont mis au point pour soutenir la filière et permettre des études épidémiologiques plus fines. Malheureusement, le peu d’informations accumulées pendant la fin du siècle dernier rend urgent l’implication de tous les acteurs de la filière (éleveurs, groupements, vétérinaires, chercheurs, pouvoirs publics) et si les données plus récentes sont encourageantes, il faut continuer a travailler ensemble pour progresser le plus rapidement possible et ne faire de cette maladie qu’'un mauvais souvenir.

INTRODUCTION L’'histomonose est une maladie parasitaire, infectieuse propre aux oiseaux galliformes. Il s'agit d'une typhlohépatite affectant particulièrement la dinde qui se manifeste cliniquement par un syndrome aigu avec émission d'une diarrhée jaune soufre et souvent mortalité. Parfois, on peut observer une cyanose des appendices charnus de la tête d’où son nom de « Maladie de la tête noire » (Blackhead disease). Elle est caractérisée par des lésions caséo-nécrotiques des caecums et du foie. Elle est également connue sous la dénomination de « Maladie de la crise du rouge » qui évoque l'âge auquel les animaux sont particulièrement sensibles. L'agent responsable est un protozoaire flagellé, Histomonas melagridis, caractérisé par un polymorphisme et par un cycle très particulier. Les espèces de galliformes concernés sont surtout la dinde et le poulet mais aussi la pintade, le faisan, la perdrix, la caille et le paon. 1. PLUS D'UN SIECLE D’HISTOIRE L'histomonose de la dinde a été décrite dès 1895 (Smith, 1895) dans un article intitulé « An infectious disease among turkeys caused by protozoa (infectious enterohepatitis) » qui décrit l'agent pathogène Amoeba meleagridis dans les lésions hépatiques. Cette affection grave a sévi dans les élevages de dindes jusqu'au développement de molécules chimiques actives contre les flagellés et leur utilisation systématique en élevage de dindes. Beaucoup de connaissances actuelles sur ce parasite ont été publiées entre 1919 et 1932 par Tyzzer, à savoir la nature zoologique de ce parasite, le rôle du poulet dans son cycle épidémiologique et la transmission du parasite par les oeufs d"hétérakis. Depuis les années 80, très peu de travaux avaient été publiés sur cette pathologie avec seulement 11 articles de recherches publiés entre 1980 et 1999 (source PubMed). Cette typhlo-hépatite s"était faite quelque peu oublier car les dindes recevaient en prévention une supplémentation systématique en Dimétridazole ou Nifursol (Callait et al., 2002), mais depuis le 31 mars 2003, date de retrait du Nifursol, il n"existe plus aucune molécule disponible dans la Communauté Européenne. Une telle décision a de graves conséquences et l’histomonose est devenue une pathologie très préoccupante pour toute la filière. Les données épidémiologiques concernant les cas d’histomonose clinique, récoltées par le CIDEF (Comité Interprofessionnel de la Dinde Française) entre mai et décembre 2004 montrent bien la prévalence importante des cas d’histomonose chez la dinde. Durant cette période, le CIDEF a enregistré plus de 50 cas déclarés (lots atteints) avec des taux de mortalité au sein des lots variant de 0 à près de 80%. Moins de 10% de mortalité ont été observés dans plus de la moitié des lots, alors que 20% des lots ont eu une mortalité de plus de 40%. 2. LE PARASITE Histomonas meleagridis est un protozoaire flagellé caractérisé par son polymorphisme. Deux formes existent chez l’hôte définitif : une forme dépourvue de flagelle observée dans les tissus et une forme flagellée dans la lumière des caecums (Figure 2). La forme tissulaire est ronde ou ovale avec un diamètre compris entre 6 et 16 µm, sans flagelle émettent des pseudopodes courts et émoussés. Le noyau (environ 3 µm) est généralement la seule structure interne qui peut être observée sans coloration. La forme flagellée est voisine de la précédente mais elle possède un flagelle et des vacuoles digestives. Figure 2 - A. Formes flagellés et amiboïdes en culture ; B. Formes flagellés en culture marquées par immunofluorescence (flagelle, axostyle et pelta en vert et ADN nucléaire en bleu). Le cycle évolutif (Figure 3) est lié à celui d'’un nématode Heterakis gallinarum, parasite lui aussi des caecums de volailles (Bussiéras et Chermette, 1992). La transmission du parasite d’un hôte à l’autre s'’effectue par l’intermédiaire des oeufs du nématode très résistants dans le milieu extérieur. Les oeufs larvés ingérés libèrent le protozoaire dans la cavité caecale, où ils se multiplient par bipartition simple. Ce dernier envahit ensuite la paroi et gagne le foie par voie sanguine. Dans les caecums, il cohabite avec les adultes d’Heterakis chez qui il peut pénétrer par la bouche, gagner les oeufs chez les femelles et se retrouver dans les oeufs puis les larves infestantes présentes dans les oeufs. Les oeufs d’Heterakis assurent non seulement une longue survie du parasite dans le milieu extérieur mais aussi une protection dans les premières voies digestives. Les oeufs embryonnés d’Heterakis peuvent être ingérés par des vers de terre, hôtes paraténiques, qui accumulent et véhiculent les larves porteuses d’Histomonas. Les formes trophozoïques rejetées dans les fientes ne peuvent survivre que quelques heures dans le milieu extérieur, mais la possibilité d’une transmission latérale directe par coprophagie ou par « cloacal droping » est admise par certains auteurs (McDougald 1997b, Hu et al. 2004). Figure 3 - Cycle d’Histomonas meleagridis. 3. LA MALADIE 3.1. Les espèces affectées. De nombreux galliformes peuvent héberger le parasite. La dinde et la perdrix sont très sensibles, alors que le poulet, la pintade, le faisan, la caille et le paon développent en général une pathologie beaucoup moins marquée (Savey et Chermette 1981 ; McDougald 1997a). Les formes les plus graves chez la dinde s’expriment lors de la « crise du rouge » dès la fin du premier mois mais surtout de 8 à 18 semaines (Nicholas, 1972). Il existe des variations de sensibilité en fonction des races, ainsi les poulets Rhodes Island apparaissent plus résistants que les White Leghorn et les New Hampshire (Lund 1967). Les poulets et les dindes adultes sont réceptifs mais peu sensibles à l’histomonose clinique mais excrètent de nombreux oeufs d’Heterakis, nématode vecteur du protozoaire (Savey et Chermette 1981 ; McDougald et Reid, 1978). Les oiseaux porteurs sains (volailles peu sensibles, dindes âgées, oiseaux sauvages) constituent des réservoirs qui excrètent également des oeufs d’hétérakis très résistants dans la nature. Le rôle du nématode comme vecteur est très important du fait qu’il parasite les mêmes hôtes et qu’il protège Histomonas dans le milieu extérieur. Les vers de terre jouent aussi un rôle épidémiologique important en disséminant et concentrant les parasites. Des arthropodes tels des mouches et des crickets ont été décrits comme vecteurs mécaniques de l’histomonose (McDougald 1997a). 3.2. Symptômes cliniques. La majorité des protozoaires est probablement libérée entre le premier et le cinquième jour après l’ingestion des oeufs d’Heterakis. Une phase de multiplication, d’au moins 6 jours, a lieu avant que n’apparaissent les premiers symptômes (Lund, 1972). La période d’incubation, de 7 à 10 jours, est la même quelque soit la modalité d’infestation, oeufs d’Heterakis ou vers de terre contaminés (McDougald, 1997a). Un des premiers signes caractéristiques de l’histomonose est la diarrhée jaune souffre (Figure 4), résultat de l’inflammation caséeuse des caecums, qui apparaît ves le 9ème ou 10ème jour. Les autres signes cliniques sont les plumes tachées de fientes, l’anorexie, la somnolence, la démarche anormale, la tête basse ou cachée sous une aile. On peut parfois observer une coloration plus sombre de la tête (à l’origine d’une des synonymies de la maladie) (Bondurant et Wakenell, 1994). A partir du 12ème jour, les dindes deviennent très « amaigries ». Figure 4 - Diarrhée jaune souffre. L’évolution peut alors être fatale, avec une mortalité importante vers le 14ème jour, parfois dès le 11 ou 12ème jour, atteignant un pic vers le 17ème jour et persistant jusqu’à la fin de la quatrième semaine et pouvant être aggravée du fait d’affections secondaires et notamment respiratoires (Lund, 1972). Un certain nombre de dindes malades peut survivre mais elles présenteront un retard de croissance par rapport aux dindes non atteintes cliniquement. 3.3. Lésions. Les lésions sont en général très précoces, précédant les premiers symptômes. Elles intéressent les caecums et le foie (Figure 5). Les lésions caecales affectent un ou deux caecums; elles peuvent intéresser la totalité de l’organe ou être localisée, notamment à l’extrémité borgne (Lesbouyries , 1941). Après invasion des tissus par les parasites, les parois caecales sont épaissies et congestionnées. La muqueuse sécrète un abondant exsudat pouvant distendre l’organe et dans lequel les Histomonas peuvent être isolés (Lund, 1972 ; McDougald et Reid 1978). Les caecums se présentent ensuite comme de gros boudins irréguliers fermes à la palpation, à surface bosselée et à paroi épaissie. A l'’ouverture, on observe des lésions ulcératives et caséonécrotiques ainsi qu’un gros bouchon de couleur jaune, résultat de la déshydratation de l’exsudat et dans lequel les flagellés sont difficiles à mettre en évidence (Lesbouyries 1941, McDougald et Reid, 1978). Le processus ulcératif peut aboutir à la perforation de la paroi caecale provoquant ainsi une péritonite généralisée (Bondurant et Wakenell, 1994). Lors du passage à la chronicité, il est possible d’observer des adhérences entre un caecum et les anses intestinales voisines ou même avec la paroi abdominale (Lesbouyries, 1941). Les lésions hépatiques apparaissent en général chez la dinde vers le 9ème ou le 10ème jour, mais peuvent être totalement absente (Lund, 1972). Elles sont variables et fonction de l’épisode clinique et de l’âge de la dinde. Les lésions décrites classiquement sont des foyers nécrotiques sous forme de tâches en cocarde, avec des bords surélevés et un centre en dépression. Leur nombre est variable et leur taille est de quelques millimètres à plusieurs centimètres de diamètre, donnant au foie un aspect tacheté très caractéristique. On peut aussi observer une hypertrophie et une décoloration du foie (McDougald et Reid 1978). D’autres organes tels les reins, les poumons et la rate, présentent parfois des foyers arrondis nécrotiques, hémorragiques ou nodulaires, mais sans présence du parasite (Malewitz et al. 1958). Figure 5 - Lésions caecales (A) et hépatiques (B) lors d’une histomonose clinique. 3.4. Diagnostic. Le diagnostic clinique de cette affection en élevage est basé sur les éléments épidémiologiques (jeunes animaux, allure épidémique) et les symptômes (diarrhée jaune souffre, anorexie, somnolence, démarche anormale etc). Le diagnostic nécropsique permet d’observer des lésions caecales uni- ou bilatérales associées ou non à des lésions hépatiques. L’atteinte concomitante des deux organes, non systématique, est pathognomonique. Actuellement, des scores lésionnels ont été définis pour noter les lésions macroscopiques hépatiques et caecales lors des autopsies. Leur utilisation systématique par toutes les personnes pratiquant des autopsies de dindes atteintes d’histomonose présenterait des avantages. D’une part, elle permettrait de comparer toutes les autopsies effectuées sur des critères objectifs et notamment la gravité des lésions observées. D’'autre part, elle pourrait avoir un rôle d’évaluation du degré d’atteinte d’une exploitation, même si cette utilisation pronostique reste à valider sur le terrain. Le diagnostic différentiel doit envisager toutes les maladies à l’origine de typhlite et/ou d’hépatite (tuberculose aviaire, salmonellose, pasteurellose, maladie de Marek, trichomonose caecale,…). Le diagnostic de certitude repose sur la mise en évidence du parasite par examen direct microscopique. Celui-ci présente des difficultés de lecture dans la mesure où la distinction avec d’autres protozoaires présents dans les caecums, à savoir Tetratrichomonas gallinarum et Blastocystis sp. est délicate. La mise en culture du parasite peut également être envisagée, mais elle implique d’être réalisée par un laboratoire maîtrisant la culture, difficile, du parasite (Zenner et al. 2002). Nous avons mis au point une technique PCR appliquée au diagnostic de l’histomonose (Huber et al., 2005). Cette technique actuellement en cours de validation dans l’unité devrait permettre un diagnostic de certitude plus simple et applicable à plus grande échelle que l’examen direct pour la recherche de parasite.

en fait sarah tous les animaux se mangent! les paons se mangeaient au moyen âge encore.. normal ce sont de gros faisans! le faisans doré est aussi comestible mais jugé trop beau pour être mangé, de plus son poids fait qu'il n'atteint pas le kilo! ainsi ce sera une pure perte de temps que d'espérer y trouver beaucoup de chair.. voilà pourquoi ces animaux sont considérés comme étant ornementaux.. mais rien en t'empêche de les manger heureusement que tu as posé la question car on pense souvent que ornement = indigeste.. pas question! C'est juste un état d'esprit! chez moi la nègre soie se mange.. et le jour ou j'en choppe une.... couic pour goûter!

houuuu les mauvaises langues!! la poste à finalement assez bioen travaillé! comme le disait Plume, ils sont du sentir des secousses sismiques et le début d'une éruption volcanique dans ma commune! J'ai reçu TOUS mes oeufs aujourd'hui!!! avec de surcroit AUCUN oeufs cassé 50 oeufs d'agnès comprenant : - padoue (juste 1 oeuf) - Brahma Colombia (fauve herminé noir) - Brahma foncée (perdrix maillé argenté) - houdan - faverolles - braeckel et 6 marans d'une belle couleur d'oeuf!! environ de 6 à 7 sur l'echelle des couleurs des oeufs de marans et 36 oeufs de marans non sélectionnés de mon éleveur de couleur 4 à 5 d'une moins belle couleur que ceux d'agnès je n'ai pris que les photos du carton de l'éleveur qui pourra donner une idée car cette méthode est nouvelle pour moi.. le carton d'agnès lui était vraiment super.. Chaque oeuf emballé dans de l'essui-tout et le tout dans une boite à oeufs, elle aussi emballée dans de l'éssuie tout positionnée dans le carton, callée par des billes de polystyrène. et ce même carton était noyé dans un autre carton plus grand avec des billes de polystyrene tout autour : du grand art des Cotes d'armor !! les photos à venir! (le temps de les mettre sur le pc). ma couveuse chauffe depuis ce matin, je vais laisser reposer les oeufs 1/2 journée et les mettre en couveuse ce soir à 21h soit dans 6 heures environ. je ferais une fumigation de la couveuse dans quelques minutes!

Bouhh c'est pas beau les pattes à 5 doigts! et c'est ULTRA MEGA EXOTIQUE pour moi! et.. à vous deux Math et Plume si j'entends ricaner! merci agnès d'avoir pensé une fois encore à moi

voila ce qui est marqué sur le site ce matin : de qui se moque t'on? je sens que je vais gueuler aujourd'hui! le tiens agnès est sensé être Re-livré aujourd'hui!, ce lui de l'éleveur est encore dans les choux! même message datant du 28

celui qui a attaqué sa coquille par la pointe, tu laisse faire ? c'est du a quoi?