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Toute une série de photos trouvées dans un magasine de mode.

Voici la version, moins "fleur bleue", d'un vétérinaire contacté par le "post" suite à cette vidéo. "Au risque de décevoir beaucoup de monde, non, il ne lui fait pas un massage cardiaque. Ce comportement s'appelle le pétrissage. C'est ce que font les chatons de façon innée au contact des mamelles de leur mère pour stimuler la montée de lait. Ce comportement est associé au ronronnement. Parfois même rassasié, ils continuent à pétrir, et que c'est parce qu'ils associent rapidement la sensation de bien être et de chaleur à ce comportement. On retrouve ce comportement chez le chat adulte : il est fréquent de voir un chat ronronner et/ou pétrir lorsqu'il est sur un coussin ou sur les jambes de son maître. C'est synonyme de bien être et d'apaisement. De façon plus surprenante; il est fréquent de voir un chat subissant un gros stress ou un chat en fin de vie (détresse physique, douleur...) se mettre à ronronner voire à pétrir. L'explication exacte n'est pas connue (ahhh le jour où on saura ce que les animaux pensent vraiment!) mais il est coutume de dire que le chat exprime ainsi son désarroi... Il chercherait alors via ce comportement, à quémander l'aide de sa maman, ou à essayer de retrouver cette sensation de bien être qu'il associe au ronronnement et dont il a besoin compte tenu de sa détresse. A mon avis (mais ça ne reste que mon avis, et je peux me tromper), le chat vivant connaît l'animal qui est mort, et l'angoisse de le voir inanimé provoque ce ronronnement et pétrissage de stress. Cherche-t-il à apporter du bien être à l'animal mort, où à exprimer ainsi sa détresse... mystère ! En tous cas, ce qui est sûr c'est qu'il ne cherche pas à le réanimer." Source: http://www.lepost.fr/article/2010/04/22/2044276_un-chat-medecin.html

Scène d'émotion dans les rues d'Antalya en Turquie. Selon les témoins de la scène, une voiture venait de renverser la chatte que l'on voit couchée lorsqu'un autre animal, apparemment sont "petit-ami" s'est approché pour tenter de la réanimer. Le chat serait ainsi resté durant près de deux heures, empêchant les passants de s'approcher de sa bien-aimée. Celle-ci a finalement été emmenée chez un vétérinaire qui n'a, malheureusement, pas réussi à la sauver (la fin de cette histoire est différente selon les sources).

César a été enlevé, Séraphine pleure… César, l'intrépide qu'il faut constamment surveiller ; César, le vorace qui adore autant le pissenlit que la banane ou le kiwi ; César, l'infatigable qui vadrouille sans cesse, a échappé quelques instants à la surveillance de ses propriétaires pour se retrouver sur le trottoir, au 21, avenue Julien-Bailly à Figeac. Vendredi 9 avril, aux alentours de 17 h 30, il a été enlevé. Comme le héros de Jean de La Fontaine, César est une tortue terrestre mâle. M. et Mme Bouguerra ont immédiatement donné l'alerte. Les commerçants du foirail ont apposé une affichette et en ont parlé à leurs nombreux contacts. De grands panneaux ont été disposés sur le trottoir, tout le quartier était en alerte. « C'est ainsi que mardi 20 avril, des témoins ont permis d'identifier le ravisseur, puisqu'il a reconnu les faits », explique M. Bouguerra. « Son ravisseur avait, dans un premier temps, accepté de le restituer en nous demandant de patienter jusqu'à la fin de la semaine, pour le récupérer auprès de la personne à qui il l'aurait confié et qui posséderait un élevage de tortues à Capdenac. Ensuite, il s'est ravisé pour une obscure raison et nous a annoncé qu'il l'avait abandonné sur un terrain, du côté de La Capelette, pour le rendre à la nature », raconte M. Bouguerra. César laisse une compagne, Séraphine, dans une grande tristesse et des maîtres inconsolables. Cette séparation qui brise 25 ans de vie commune est aussi cruelle qu'inacceptable. Ses propriétaires demandent de l'aide pour retrouver la personne qui élèverait des tortues à Capdenac. D'avance, ils remercient toutes les personnes qui les aideraient à retrouver César. Contact : 05 65 34 71 92 ou http :/recherchonscesar.blogspot.com Source: http://www.ladepeche.fr/article/2010/05/09/831781-Figeac-Cesar-a-ete-enleve-Seraphine-pleure.html

Une formation chez un capacitaire venimeux, une pièce hermétique avec du matériel de surveillance, des terrariums sécurisés et du matériel de contention et manipulations (crochets, pinces, etc) seront les bienvenus pour le maintien de serpents venimeux.

L’OMS rappelle le besoin vital de sérums antivenimeux Avec plus de 100 000 décès par an dus aux morsures de serpents et des pays confrontés à une pénurie de sérums antivenimeux adaptés, l’accès aux sérums disponibles et les informations à ce sujet prennent de plus en plus d’importance. L’Organisation mondiale de la Santé (OMS) publie de nouvelles lignes directrices pour la production, la réglementation et le contrôle des sérums contre les venins de serpents, ainsi qu’un site Web donnant des informations sur les serpents venimeux, leur localisation, leur morphologie, les sérums antivenimeux adaptés et où se les procurer. « De nombreux pays n’ont pas accès aux sérums antivenimeux dont ils ont besoin. D’autres utilisent des sérums qui n’ont jamais été testés contre les venins qu’ils ciblent. Il arrive donc souvent qu’en cas de morsure de serpent, les victimes ne peuvent pas obtenir le traitement dont elles ont besoin », explique Carissa Etienne, Sous-Directeur général à l’OMS. Ces nouveaux outils contribueront à mettre un terme à cette situation. » Situation mondiale Selon les estimations, 5 millions de personnes sont mordues chaque année. Il en résulte jusqu’à 2,5 millions de cas d’envenimement, au moins 100 000 décès et environ trois fois plus d’amputations et d’autres incapacités définitives. Les morsures de serpents venimeux peuvent paralyser la respiration, entraîner des troubles sanguins aboutissant à des hémorragies mortelles ou provoquer des insuffisances rénales irréversibles et des lésions tissulaires sévères à l’origine d’incapacités définitives et pouvant nécessiter l’amputation d’un membre. Dans leur grande majorité, les victimes sont des femmes, des enfants et des agriculteurs vivant dans des communautés rurales pauvres, où les systèmes de santé sont mal équipés et manquent de ressources. Aujourd’hui, il y a une pénurie mondiale de sérums adaptés, sûrs et efficaces contre les venins de serpents. Plusieurs facteurs se sont associés pour aboutir à la situation actuelle : données insuffisantes sur le nombre et le type des morsures de serpents, difficulté à estimer les besoins et à définir les marchés, déficience des politiques de distribution. En conséquence les fabricants ont soit arrêté la production, soit augmenté les prix des sérums antivenimeux. L’insuffisance de la réglementation et la commercialisation de sérums inadaptés ont sapé la confiance des cliniciens, des responsables de la santé publique et des patients dans les sérums existants. Solution L’existence de sérums sûrs et efficaces suppose une collaboration internationale. L’OMS demande aux responsables de la réglementation, aux producteurs, aux chercheurs, aux cliniciens, aux autorités sanitaires nationales et régionales, aux organisations internationales et aux organisations communautaires de collaborer pour améliorer la disponibilité de données épidémiologiques fiables sur les morsures de serpents, les contrôles règlementaires des sérums antivenimeux et la politique en matière de distribution. Les informations contenues dans les lignes directrices aideront : * les responsables de la santé publique à déterminer les sérums nécessaires dans leur pays et à élaborer une politique nationale appropriée de santé publique ; * les personnes chargées des règlementations pharmaceutiques nationales à donner la priorité aux sérums antivenimeux pour l’homologation et pour en évaluer l’innocuité, la qualité et l’efficacité, afin de répondre aux besoins de la santé publique nationale ; * les organismes d’achat à sélectionner les sérums adaptés pour les besoins thérapeutiques nationaux ; * les fabricants à élaborer des plans de production et de vente des sérums antivenimeux adaptés ; * les médecins et les professionnels de la santé à traiter les morsures de serpents ; * le grand public à connaître et à pouvoir identifier les espèces de serpents venimeux vivant dans la région où il habite. Les lignes directrices donnent des informations pour la production, la réglementation et le contrôle des sérums antivenimeux et la base de données en ligne identifie les espèces de serpents venimeux pour lesquelles la mise à disposition de sérums adaptés doit être prioritaire. Source: http://www.who.int/mediacentre/news/notes/2010/antivenoms_20100504/fr/index.html Liens: - Base de données de serpents venimeux (en anglais): http://apps.who.int/bloodproducts/snakeantivenoms/database/ - Lignes directrices sur les sérums antivenimeux (en anglais): http://www.who.int/bloodproducts/snake_antivenoms/snakeantivenomguideline.pdf

Si le volume de ton futur terrarium peut convenir à un couple de Pantherophis guttatus, j'ai peur que les dimensions de 40 de profondeur et 45 de hauteur, donnent à ton futur projet un aspect "étroit", surtout si tu le fabriques en bois. Si c'est possible selon la place que tu as, essaye de donner un peu plus de hauteur et de profondeur, style 50 ou 60 cm.

Combien d'oeufs?

Belle ponte. Et bonne chance pour la suite...

J'ai un mâle adulte Heterodon nasicus, âgé de 5 ans, qui fait qu'entre 6 et 8 prise de nourriture (1 souris adulte par repas) dans l'année et cela depuis qu'il s'est reproduit pour la première fois à l'âge de deux ans. Il mange, qu'après avoir fait sa période de repos et s'être s'accoupler.

Une touriste américaine tuée par un crocodile en Inde Laura Failla, une étudiante américaine de 25 ans originaire de Morristown (New Jersey), est décédée au cours de ses vacances en Inde où elle a été tuée par un crocodile alors qu'elle faisait du snorkling (plongée en apnée) sur l'Ile d'Havelock. Le crocodile a entraîné le corps de la fille avec lui. Il a fallu deux jours avant que son corps ne soit retrouvé. Il a été très difficile de voler sa proie à l'animal, a avisé le Sheekha Andaman. Une amie de la victime a filmé l'attaque du crocodile. Pour les parents de Laura, Frank et Kay, c'est la deuxième fille qu'ils perdent au cours de vacances. La soeur de Laura ayant été tuée en 2004 lors du chute d'escalade. 24 attaques, 4 morts La famille de la défunte est en colère parce qu'il n'y avait aucun avertissement sur le fait qu'il y avait des crocodiles dans cette zone. 24 personnes y ont été attaquées ces dernières années par des crocodiles, quatre personnes n'ont pas survécu. A 70 km de l'Ile d'Havelock seulement, se trouve un sanctuaire de crocodiles, mais c'était la première fois qu'un crocodile attaquait quelqu'un si loin de la réserve. Lors de la recherche pour retrouver le cadavre de la fille, quatre autres crocodiles ont été repérés près de la station de vacances. Source: http://www.7sur7.be/7s7/fr/1505/Monde/article/detail/1103215/2010/05/07/Une-touriste-americaine-tuee-par-un-crocodile-en-Inde.dhtml

Euscorpius flavicauda en Suisse Un habitant de Wavre a découvert un spécimen de ce scorpion (Euscorpius flavicauda) dans sa cuisine. Selon un conservateur du Muséum d'histoire naturelle de Neuchâtel, d'autres de ses congénères se baladent dans la nature... «Notre chien reniflait quelque chose entre le parquet et le mur. On a d'abord cru que c'était une grosse araignée», se souvient Jean-Jacques Masson. Lorsque les présentations animales virent à la course-poursuite, l'habitant de Wavre n'en croit pas ses yeux. «Un scorpion galopait dans la cuisine!» L'homme enferme la bête dans un bocal. Avant de décrocher le combiné pour en savoir plus sur sa découverte. «Que fait cet engin-là dans la région?»... Au bout du fil, Blaise Mulhauser, conservateur au Muséum d'histoire naturelle de Neuchâtel. L'engin en question s'appelle Euscorpius flavicauda. Scorpion noir à queue jaune, pour les moins intimes. Et le spécimen de trois centimètres n'est pas le seul à balader ses huit pattes en terre neuchâteloise. «Des scorpions de cette espèce ont été observés dans la région depuis 1940», explique Blaise Mulhauser. «Contrairement à la mygale, les cas sont trop nombreux pour suivre uniquement la thèse de l'animal échappé d'un terrarium. On pense plutôt que ces scorpions ont voyagé dans des pots de fleurs, par exemple, et se sont acclimatés.» Algérie, Corse, sud de la France... Ce scorpion prolifère d'habitude sous des cieux plus cléments. «Le réchauffement climatique a sans doute facilité l'installation de colonies. Environ un spécimen par année est signalé, le plus souvent à Serrières et à la Coudre», note le biologiste. «Ce scorpion, qui ne perturbe pas nos écosystèmes aime les lieux rocailleux et exposés au soleil». Si le venin qui sort de sa queue jaune neutralise grillons et petites grenouilles, il ne fait que l'effet d'une piqûre de guêpe sur un humain. Sauf si on est allergique. «C'est pourquoi il vaut mieux appeler les urgences si ça arrive, sans paniquer», prévient Blaise Mulhauser. Le spécimen de Wavre vit désormais au Muséum d'histoire naturelle de Neuchâtel. Année de la biodiversité oblige, l'institution a lancé un grand inventaire des espèces qui vivent à Neuchâtel. «Les gens qui en trouvent chez eux peuvent nous les apporter dans un bocal à couvercle troué. Si le scorpion est découvert dans la nature, c'est mieux de le laisser tranquille, une photographie suffit.» Source: http://www.arcinfo.ch/journal/region/neuchatel-littoral/article/270524/un_scorpion_sauvage_a_wavre_cest_possible.html

Les votes sont finis... Voici les résultats: Les Gagnants du concours photos sont: Dap-Dap et Franckgecko 7 votes Matt 6 votes Filoue et Mag73 3 votes Virgo 2 votes Merci à tous ceux qui ont participé ...

La famille des Dipsadidae comprends 92 genres et plus de 700 espèces répartis sur tout le continent américain. Depuis 2009, plusieurs études ont apporté beaucoup de changements au sein de cette famille. Il y a eu la création de nouveaux genres (Borikenophis, Caaetobia, Caraiba Cubophis, Haitiophis, Maglipophis, Mussurana, Pseudalsophis), la réapparition d'anciens genres (Lygophis, Ocyophis) et la disparition de certains genres (Antillophis, Lystrophis, Pseudablables, Xenoxybelis, Waglerophis). Les études concernant tous ces changements sont: N.Vidal, M.Dewynter & D.J. Gower (2010) Dissecting the major American snake radiation: A molecular phylogeny of the Dipsadidae Bonaparte (Serpentes, Caenophidia). C. R. Biologies 333: 48-55 /systematique-f53/phylogenie-moleculaire-de-la-famille-des-dipsadidae-t17164.htm S.B Hedges, A. Couloux & N. Vidal (2009) Molecular phylogeny, classification, and biogeography of West Indian racer snakes of the Tribue Alsophiini (Squamata, Dispadidae, Xenodontinae). Zootaxa 2067: 1-28 /systematique-f53/classification-des-serpents-de-la-tribu-des-alsophiini-t13882.htm H.Zaher, F.G. Grazziotin, J.E. Cadle, R.W. Murphy, J.C de Moura-Leite & S.L. Bonatto (2009) Molecular phylogeny of advanced snakes (Serpentes, Caenophidia) with an emphasis od South American Xenodontines: A revised classification and descriptions of the nex taxa. Papéis Avulsos de Zoologia 49(11): 115-153 /systematique-f53/une-version-revisee-de-la-classification-et-une-description-de-nouveaux-taxons-t13854.htm Dipsadidae Bonaparte, 1840 Sous-famille Dipsadinae Bonaparte, 1840 Adelphicos Jan, 1862 Adelphicos daryi Adelphicos ibarrorum Adelphicos latifasciatus Adelphicos nigrilatum Adelphicos quadrivirgatus Adelphicos veraepacis Amastridium Cope, 1861 Amastridium veliferum Atractus Wagler, 1828 Atractus acheronius Atractus albuquerquei Atractus alphonsehogei Atractus altagratiae Atractus andinus Atractus arangoi Atractus attenuates Atractus badius Atractus balzani Atractus biseriatus Atractus bocki Atractus bocourti Atractus boettgeri Atractus boulengerii Atractus canedii Atractus carrioni Atractus caxiuana Atractus charitoae Atractus clarki Atractus collaris Atractus crassicaudatus Atractus darienensis Atractus davidhardi Atractus depressiocellus Atractus duidensis Atractus dunni Atractus echidna Atractus ecuadorensis Atractus edioi Atractus elaps Atractus emersoni Atractus emigdioi Atractus emmeli Atractus eriki Atractus erythromelas Atractus favae Atractus flammigerus Atractus franciscopaivai Atractus fuliginosus Atractus gaigeae Atractus gigas Atractus guentheri Atractus guerreroi Atractus heliobelluomini Atractus hostilitractus Atractus imperfectus Atractus indistinctus Atractus insipidus Atractus iridescens Atractus janethae Atractus kangueryensis Atractus lancinii Atractus lasallei Atractus latifrons Atractus lehmanni Atractus limitaneus Atractus loveridgei Atractus lucilae Atractus macondo Atractus maculatus Atractus major Atractus manizalesensis Atractus mariselae Atractus matthewi Atractus medusa Atractus melanogaster Atractus melas Atractus meridensis Atractus micheleae Atractus microrhynchus Atractus mijaresi Atractus modestus Atractus multicinctus Atractus multidentatus Atractus nasutus Atractus natans Atractus nicefori Atractus nigricaudus Atractus nigriventris Atractus obesus Atractus obtusirostris Atractus occidentalis Atractus occipitoalbus Atractus ochrosetrus Atractus oculotemporalis Atractus paisa Atractus pamplonensis Atractus pantostictus Atractus paraguayensis Atractus paravertebralis Atractus paucidens Atractus pauciscutatus Atractus peruvianus Atractus poeppigi Atractus potschi Atractus punctiventris Atractus resplendens Atractus reticulatus Atractus riveroi Atractus ronnie Atractus roulei Atractus sanctaemartae Atractus sanguineus Atractus schach Atractus serranus Atractus snethlageae Atractus steyermarki Atractus surucucu Atractus taeniatus Atractus tamaensis Atractus tamessari Atractus taphorni Atractus thalesdelemai Atractus titanicus Atractus trihedrurus Atractus trilineatus Atractus trivittatus Atractus turikensis Atractus typhon Atractus univittatus Atractus variegatus Atractus ventrimaculatus Atractus vertebralis Atractus vertebrolineatus Atractus vittatus Atractus wagleri Atractus werneri Atractus zebrinus Atractus zidoki Chapinophis Campbell & Smith, 1998 Chapinophis xanthocheilus Chersodromus Reinhardt, 1860 Chersodromus liebmanni Chersodromus rubriventris Coniophanes Hallowell (in Cope), 1860 Coniophanes alvarezi Coniophanes andresensis Coniophanes bipunctatus Coniophanes dromiciformis Coniophanes fissidens Coniophanes imperialis Coniophanes joanae Coniophanes lateritius Coniophanes longinquus Coniophanes meridanus Coniophanes piceivittis Coniophanes quinquevittatus Coniophanes sarae Coniophanes schmidti Cryophis Bogert & Duellman, 1963 Cryophis hallbergi Dipsas Laurenti, 1768 Dipsas albifrons Dipsas alternans Dipsas andiana Dipsas articulata Dipsas baliomelas Dipsas bicolor Dipsas brevifacies Dipsas bucephala Dipsas catesbyi Dipsas chaparensis Dipsas copei Dipsas elegans Dipsas ellipsifera Dipsas gaigeae Dipsas gracilis Dipsas incerta Dipsas indica Dipsas infrenalis Dipsas maxillaris Dipsas nicholsi Dipsas oreas Dipsas pakaraima Dipsas pavonina Dipsas peruana Dipsas pratti Dipsas sanctijoannis Dipsas schunkii Dipsas temporalis Dipsas tenuissima Dipsas variegata Dipsas vermiculata Dipsas viguieri Geophis Wagler, 1830 Geophis anocularis Geophis bellus Geophis betaniensis Geophis bicolor Geophis blanchardi Geophis brachycephalus Geophis cancellatus Geophis carinosus Geophis chalybeus Geophis championi Geophis damiani Geophis downsi Geophis dubius Geophis duellmani Geophis dugesii Geophis dunni Geophis fulvoguttatus Geophis godmani Geophis hoffmanni Geophis immaculatus Geophis incomptus Geophis isthmicus Geophis juarezi Geophis juliai Geophis laticinctus Geophis laticollaris Geophis latifrontalis Geophis maculiferus Geophis mutitorques Geophis nasalis Geophis nephodrymus Geophis nigroalbus Geophis nigrocinctus Geophis omiltemanus Geophis petersii Geophis pyburni Geophis rhodogaster Geophis rostralis Geophis russatus Geophis ruthveni Geophis sallaei Geophis semidoliatus Geophis sieboldi Geophis talamancae Geophis tarascae Geophis tectus Geophis zeledoni Hypsiglena Cope, 1860 Hypsiglena affinis Hypsiglena chlorophaea Hypsiglena jani Hypsiglena ochrorhyncha Hypsiglena slevini Hypsiglena tanzeri Hypsiglena torquata Imantodes Dumeril, 1853 Imantodes cenchoa Imantodes gemmistratus Imantodes inornatus Imantodes lentiferus Imantodes phantasma Imantodes tenuissimus Leptodeira Fitzinger, 1843 Leptodeira annulata Leptodeira bakeri Leptodeira frenata Leptodeira maculata Leptodeira nigrofasciata Leptodeira punctata Leptodeira rubricata Leptodeira septentrionalis Leptodeira splendida Leptodeira uribei Ninia Girard (in Baird & Girard), 1853 Ninia atrata Ninia celata Ninia diademata Ninia espinali Ninia hudsoni Ninia maculata Ninia pavimentata Ninia psephota Ninia sebae Plesiodipsas Harvey, Fuenmayor, Portilla & Rueda-Almonacid, 2008 Plesiodipsas perijanensis Pliocercus Cope, 1860 Pliocercus elapoides Pliocercus euryzonus Pliocercus wilmarai Pseudoleptodeira Taylor, 1938 Pseudoleptodeira latifasciata Rhadinaea Cope, 1863 Rhadinaea anachoreta Rhadinaea bogertorum Rhadinaea calligaster Rhadinaea cuneata Rhadinaea decorata Rhadinaea flavilata Rhadinaea forbesi Rhadinaea fulvivittis Rhadinaea gaigeae Rhadinaea godmani Rhadinaea hannsteini Rhadinaea hempsteadae Rhadinaea hesperia Rhadinaea kanalchutchan Rhadinaea kinkelini Rhadinaea lachrymans Rhadinaea laureata Rhadinaea macdougalli Rhadinaea marcellae Rhadinaea montana Rhadinaea montecristi Rhadinaea myersi Rhadinaea omiltemana Rhadinaea pegosalyta Rhadinaea pilonaorum Rhadinaea posadasi Rhadinaea pulveriventris Rhadinaea quinquelineata Rhadinaea rogerromani Rhadinaea sargenti Rhadinaea schistosa Rhadinaea serperastra Rhadinaea stadelmani Rhadinaea taeniata Rhadinaea tolpanorum Rhadinaea vermiculaticeps Rhadinophanes Myers & Campbell, 1981 Rhadinophanes monticola Sibon Fitzinger, 1826 Sibon annulatus Sibon annulifera Sibon anthracops Sibon argus Sibon carri Sibon dimidiatus Sibon dunni Sibon lamari Sibon linearis Sibon longifrenis Sibon manzanaresi Sibon miskitus Sibon nebulata Sibon sanniolus Sibynomorphus Fitzinger, 1843 Sibynomorphus inaequifasciatus Sibynomorphus lavillai Sibynomorphus mikanii Sibynomorphus neuwiedi Sibynomorphus oligozonatus Sibynomorphus oneilli Sibynomorphus petersi Sibynomorphus turgidus Sibynomorphus vagrans Sibynomorphus vagus Sibynomorphus ventrimaculatus Sibynomorphus williamsi Tantalophis Duellman, 1958 Tantalophis discolor Tretanorhinus Dumeril, Bibron & Dumeril, 1854 Tretanorhinus mocquardi Tretanorhinus nigroluteus Tretanorhinus taeniatus Tretanorhinus variabilis Trimetopon Cope, 1885 Trimetopon barbouri Trimetopon gracile Trimetopon pliolepis Trimetopon simile Trimetopon slevini Trimetopon viquezi Tropidodipsas Gunther, 1858 Tropidodipsas fasciata Tropidodipsas fischeri Tropidodipsas philippii Tropidodipsas repleta Tropidodipsas sartorii Tropidodipsas zweifeli Urotheca Bibron (in de la Sagra), 1843. Urotheca decipiens Urotheca dumerilli Urotheca fulviceps Urotheca guentheri Urotheca lateristriga Urotheca multilineata Urotheca myersi Urotheca pachyura Sous-famille Heterodontinae Bonaparte, 1845 Carphophis Gervais (in d’Orbigny), 1843 Carphophis amoenus Carphophis vermis Contia Girard (in Baird & Girard), 1853 Contia tenuis Diadophis Girard ( in Baird & Girard), 1853 Diadophis punctatus Farancia Gray 1842 Farancia abacura Farancia erytrogramma Heterodon Latreille (in Sonnini & Latreille), 1801 Heterodon nasicus Heterodon platirhinos Heterodon simus Sous-famille Xenodontinae Bonaparte, 1845 Alsophis Fitzinger, 1843 Alsophis antiguae Alsophis antillensis Alsophis manselli Alsophis rijgersmaei Alsophis rufiventris Alsophis sajdaki Alsophis sanctonum Alsophis sibonius Apostolepis Cope, 1861 Apostolepis albicollaris Apostolepis ambinigra Apostolepis ammodites Apostolepis arenaria Apostolepis assimilis Apostolepis breviceps Apostolepis cearensis Apostolepis cerradoensis Apostolepis christineae Apostolepis coronata Apostolepis dimidiata Apostolepis dorbignyi Apostolepis flavotorquata Apostolepis freitasi Apostolepis gaboi Apostolepis goiasensis Apostolepis intermedia Apostolepis longicaudata Apostolepis multicincta Apostolepis nelsonjorgei Apostolepis niceforoi Apostolepis nigrolineatus Apostolepis nigroterminata Apostolepis phillipsae Apostolepis polylepis Apostolepis quinquelineata Apostolepis quirogai Apostolepis sanctaeritae Apostolepis serrana Apostolepis striata Apostolepis tenuis Apostolepis tertulianobeui Apostolepis vittata Arrhyton Günther, 1858 Arrhyton ainictum Arrhyton dolichura Arrhyton procerum Arrhyton redimitum Arrhyton supernum Arrhyton taeniatum Arrhyton tanyplectum Arrhyton vittatum Boiruna Zaher, 1996 Boiruna maculata Boiruna sertaneja Borikenophis Hedges & Vidal in Hedges, Couloux & Vidal, 2009 Borikenophis portoricensis Borikenophis sanctaecrucis Borikenophis variegatus Caaeteboia Zaher & al., 2009 Caaeteboia amarali Calamodontophis Amaral, 1963 Calamodontophis paucidens Calamodontophis ronaldoi Caraiba Zaher & al., 2009 Caraiba andreae Clelia Fitzinger, 1826 Clelia clelia Clelia equatoriana Clelia errabunda Clelia hussami Clelia langeri Clelia plumbea Clelia rustica Clelia scytalina Conophis Peters, 1860 Conophis lineatus Conophis morai Conophis pulcher Conophis vittatus Cubophis Hedges & Vidal in Hedges, Couloux & Vidal, 2009 Cubophis cantherigerus Cubophis caymanus Cubophis fuscicauda Cubophis ruttyi Cubophis vudii Ditaxodon Hoge, 1958 Ditaxodon taeniatus Drepanoides Dunn, 1928 Drepanoides anomalus Echinanthera Cope, 1894 Echinanthera amoena Echinanthera cephalomaculata Echinanthera cephalostriata Echinanthera cyanopleura Echinanthera melanauchen Echinanthera melanostigma Echinanthera undulata Elapomorphus Wiegmann (in Fitzinger), 1843 Elapomorphus lepidus Elapomorphus quinquelineatus Elapomorphus spegazzinii Elapomorphus wuchereri Erythrolamprus Boie, 1826 Erythrolamprus aesculapii Erythrolamprus bizonus Erythrolamprus guentheri Erythrolamprus mimus Erythrolamprus ocellatus Erythrolamprus pseudocorallus Gomesophis Hoge and Mertens, 1959 Gomesophis brasiliensis Haitiophis Hedges & Vidal in Hedges, Couloux & Vidal, 2009 Haitiophis anomalus Helicops Wagler, 1828 Helicops angulatus Helicops carinicaudus Helicops danieli Helicops gomesi Helicops hagmanni Helicops infrataeniatus Helicops leopardinus Helicops modestus Helicops pastazae Helicops petersi Helicops polylepis Helicops scalaris Helicops tapajonicus Helicops trivittatus Helicops yacu Hydrodynastes Fitzinger, 1843 Hydrodynastes bicinctus Hydrodynastes gigas Hydrodynastes melanogigas Hydrops Wagler, 1830 Hydrops caesurus Hydrops martii Hydrops triangularis Hypsirhynchus Günther, 1858 Hypsirhynchus ater Hypsirhynchus callilaemus Hypsirhynchus ferox Hypsirhynchus funereus Hypsirhynchus melanichnus Hypsirhynchus parvifrons Hypsirhynchus polylepis Hypsirhynchus scalaris Ialtris Cope, 1862 Ialtris agyrtes Ialtris dorsalis Ialtris haetianus Ialtris parishi Liophis Wagler, 1830 Liophis almadensis Liophis andinus Liophis anomalus Liophis atraventer Liophis breviceps Liophis carajasensis Liophis ceii Liophis cobella Liophis cursor Liophis dilepis Liophis dorsocorallinus Liophis epinephelus Liophis festae Liophis flavifrenatus Liophis frenatus Liophis guentheri Liophis ingeri Liophis jaegeri Liophis janaleeae Liophis juliae Liophis leucogaster Liophis lineatus Liophis longiventris Liophis maryellenae Liophis melanotus Liophis meridionalis Liophis miliaris Liophis ornatus Liophis paucidens Liophis perfuscus Liophis poecilogyrus Liophis problematicus Liophis reginae Liophis sagittifer Liophis steinbachi Liophis subocularis Liophis taeniogaster Liophis taeniurus Liophis torrenicola Liophis trebbaui Liophis triscalis Liophis typhlus Liophis vanzolinii Liophis viridis Liophis vitti Liophis williamsi Lygophis Fitzinger, 1843 Lygophis anomalus Lygophis dilepis Lygophis elegantissimus Lygophis flavifrenatus Lygophis meridionalis Lygophis paucidens Lygophis vanzolinii Magliophis Zaher & al., 2009 Magliophis exiguum Magliophis stahli Manolepis Cope, 1885. Manolepis putnami Mussurana Zaher & al., 2009 Mussurana bicolor Mussurana montana Mussurana quimi Oxyrhopus Wagler, 1830 Oxyrhopus clathratus Oxyrhopus doliatus Oxyrhopus erdisii Oxyrhopus fitzingeri Oxyrhopus formosus Oxyrhopus guibei Oxyrhopus leucomelas Oxyrhopus marcapatae Oxyrhopus melanogenys Oxyrhopus occipitalis Oxyrhopus petola Oxyrhopus rhombifer Oxyrhopus trigeminus Phalotris Cope, 1862 Phalotris bilineatus Phalotris concolor Phalotris cuyanus Phalotris labiomaculatus Phalotris lativittatus Phalotris lemniscatus Phalotris matogrossensis Phalotris mertensi Phalotris multipunctatus Phalotris nasutus Phalotris nigrilatus Phalotris punctatus Phalotris sansebastiani Phalotris tricolor Philodryas Wagler, 1830 Philodryas aestivus Philodryas agassizii Philodryas argenteus Philodryas arnaldoi Philodryas baroni Philodryas boulengeri Philodryas chamissonis Philodryas cordata Philodryas laticeps Philodryas livida Philodryas mattogrossensis Philodryas nattereri Philodryas olfersii Philodryas patagoniensis Philodryas psammophidea Philodryas simonsii Philodryas tachymenoides Philodryas trilineata Philodryas varia Philodryas viridissima Phimophis Cope, 1860 Phimophis chui Phimophis guerini Phimophis guianensis Phimophis iglesiasi Phimophis scriptorcibatus Phimophis vittatus Pseudalsophis Zaher & al., 2009 Pseudalsophis biserialis Pseudalsophis dorsalis Pseudalsophis elegans Pseudalsophis hoodensis Pseudalsophis slevini Pseudalsophis steindachneri Pseudoboa Schneider, 1801 Pseudoboa coronata Pseudoboa haasi Pseudoboa martinsi Pseudoboa neuwiedii Pseudoboa nigra Pseudoboa serranai Pseudoeryx Fitzinger, 1826 Pseudoeryx plicatilis Pseudoeryx relictualis Pseudotomodon Koslowski, 1896 Pseudotomodon trigonatus Psomophis Myers & Cadle, 1994 Psomophis genimaculatus Psomophis joberti Psomophis obtusus Ptychophis Gomes, 1915 Ptychophis flavovirgatus Rhachidelus Boulenger, 1908 Rhachidelus brazili Saphenophis Myers, 1973 Saphenophis antioquiensis Saphenophis atahuallpae Saphenophis boursieri Saphenophis sneiderni Saphenophis tristriatus Siphlophis Fitzinger, 1843. Siphlophis cervinus Siphlophis compressus Siphlophis leucocephalus Siphlophis longicaudatus Siphlophis pulcher Siphlophis worontzowi Tachymenis Wiegmann, 1834 Tachymenis affinis Tachymenis attenuata Tachymenis chilensis Tachymenis elongata Tachymenis peruviana Tachymenis surinamensis Tachymenis tarmensis Taeniophallus Cope, 1895 Taeniophallus affinis Taeniophallus bilineatus Taeniophallus brevirostris Taeniophallus nebularis Taeniophallus nicagus Taeniophallus occipitalis Taeniophallus persimilis Taeniophallus poecilopogon Taeniophallus quadriocellatus Thamnodynastes Wagler, 1830 Thamnodynastes almae Thamnodynastes ceibae Thamnodynastes chaquensis Thamnodynastes chimanta Thamnodynastes corocoroensis Thamnodynastes dixoni Thamnodynastes duida Thamnodynastes gambotensis Thamnodynastes hypoconia Thamnodynastes lanei Thamnodynastes longicaudus Thamnodynastes marahuaquensis Thamnodynastes pallidus Thamnodynastes paraguanae Thamnodynastes ramonriveroi Thamnodynastes rutilus Thamnodynastes sertanejo Thamnodynastes strigatus Thamnodynastes yavi Tomodon Duméril (in Duméril, Bibron & Duméril), 1853 Tomodon dorsatus Tomodon ocellatus Tomodon orestes Tropidodryas Fitzinger, 1843 Tropidodryas serra Tropidodryas striaticeps Umbrivaga Roze, 1964 Umbrivaga mertensi Umbrivaga pyburni Umbrivaga pygmaea Uromacer Duméril, Bibron & Duméril, 1854 Uromacer catesbyi Uromacer frenatus Uromacer oxyrhynchus Xenodon Boie, 1826 Xenodon dorbignyi Xenodon guentheri Xenodon histricus Xenodon matogrossensis Xenodon merremi Xenodon nattereri Xenodon neuwiedii Xenodon pulcher Xenodon rabdocephalus Xenodon semicinctus Xenodon severus Dipsadidae incertae sedis Cercophis Fitzinger, 1843 Cercophis auratus Crisantophis Villa, 1971 Crisantophis nevermanni Diaphorolepis Jan, 1863 Diaphorolepis laevis Diaphorolepis wagneri Emmochliophis Fritts and Smith, 1969 Emmochliophis fugleri Emmochliophis miops Enuliophis McCran & Villa, 1993 Enuliophis sclateri Enulius Cope, 1870 Enulius bifoveatus Enulius flavitorques Enulius oligostichus Enulius roatanensis Hydromorphus Peters, 1859 Hydromorphus concolor Hydromorphus dunni Lioheterophis maral 1934 Lioheterophis iheringi Nothopsisi Cope, 1871 Nothopsis rugosus Sordellina Procter, 1923 Sordellina punctata Synophis Peracca, 1896 Synophis bicolor Synophis calamitus Synophis lasallei Synophis plectovertebralis Uromacerina Amaral, 1929 Uromacerina ricardinii Xenopholis Peters, 1869 Xenopholis scalaris Xenopholis undulatus Xenopholis werdingorum

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La grenouille et l'homme cousins génétiques la revue Science publie le premier génome d'amphibien séquencé. Il s'agit de la grenouille Xenopus tropicalis. Cet animal est un modèle de laboratoire très étudié. Têtard de Xenopus tropicalis L'analyse de son génome montre d'importantes similitudes avec le notre. Ainsi près de 80% des gènes connus pour être associés à des maladies chez l'homme ont un équivalent chez Xenopus tropicalis. Cette étude a été conduite par une équipe internationale de près de 50 scientifiques de différents pays (Etats-Unis, Japon, Royaume-Uni), avec la participation de Nicolas Pollet (Cnrs, Génopole d'Evry, équipe d'épigénomique). Cette équipe est conduite par Uffe Hellsten du Joint Genome Institute à Walnut Creeket (Californie), financé par le ministère de l'Energie (eh oui, aux Etats-Unis, le DOE finance la génétique... (Xenopus tropicalis à gauche et Xenopus leavis à droite) On n'est plus aux débuts de la génomique, lorsque les équipes se contentaient d'un séquençage "brut de fonderie" comme premier travail. Cet article montre donc les résultats de plusieurs analyses et comparaisons du génome de Xenopus tropicalis (photo à gauche, Xenopus tropicalis à gauche et Xenopus leavis à droite), composé d'environ 20.000 gènes, avec d'autres génomes connus. Outre les similitudes avec 1700 gènes humains liés aux maladies, on apprend que la structure du génome de cette grenouille présente des similarités remarquables avec le notre ou celui... de la poule. Des régions apparaissent où les gènes sont disposés dans le même ordre que chez nous ou ce volatile, phénomène connu sous le nom de «synténie conservée». Ces régions communes correspondent aux fragments d’un génome vieux de 360 millions d’années, celui du dernier ancêtre commun à tous les mammifères, oiseaux, amphibiens et dinosaures ayant existé sur la Terre. Les grenouilles et d’autres amphibiens subissent les agressions de toxines environnementales et du changement de leur habitat. Ils sont considérés comme des organismes sentinelles en raison de leur extrême sensibilité aux polluants présents dans le milieu ou leur nourriture. L’application des méthodes de génomique pour voir la réponse des grenouilles à l’environnement pourrait aider à préserver leur diversité. Source: http://sciences.blogs.liberation.fr/home/2010/04/la-grenouille-et-lhomme-cousins-g%C3%A9n%C3%A9tiques.html Article: http://sciences.blogs.liberation.fr/files/xenopus-genome.pdf

http://www.cnah.org/pdf_files/1467.pdf